Россия
Россия
Россия
Россия
Россия
УДК 58.035 Действие поглощенного и испускаемого света. Люминесценция
Использование светодиодного досвечивания адаптируемых кассетных растений гейхеры и вейгелы после их клонального микроразмножения способствует компенсации низкого естественного уровня освещенности и продолжительности светового периода в осенне-зимний период, что приводит к существенному ускорению роста и накоплению биомассы листьев (площадь листовой пластинки, суммарная площадь листьев растения) как основных фотосинтезирующих органов. В сформированном листовом аппарате протекают ассимиляционные процессы, что определяет рост и развитие других органов растительного организма и влияет на массу всего растения. У изучаемых декоративных культур энергетические показатели источников освещения (ФАР, PPFD, уровень освещенности) напрямую влияют на величину площади листовой пластинки и общую площадь листьев растения (R=0,73…0,92). Установлены положительные корреляции между долей в спектре фитоламп красного диапазона с массой листьев (R=0,42…0,44) и массой всего растения (R=0,42…0,56). При этом с увеличением доли синего спектрального диапазона отмечено снижение сухой массы основных органов растения и его общей массы (R=-0,50…-0,78). Наиболее высокие темпы роста и развития растений гейхеры и вейгелы отмечены в вариантах 4, 5 (светодиодные фитолампы полного спектра с интенсивной освещенностью) и 7 (фитолампа с красно-синим спектром и фиолетовым оттенком свечения), поэтому целесообразнее сократить продолжительность периода их адаптации в среднем в 1,5 раза. Это позволит увеличить за год количество циклов производства саженцев садовых культур ускоренными биотехнологическими методами – при последовательном сочетании клонального микроразмножения и адаптации растений в защищенном грунте, получив соответствующий стандартам питомниководства растительный материал.
гейхера, вейгела, клональное микроразмножение, адаптация ex vitro, укорененные микрорастения, искусственное досвечивание, светодиодные источники освещения
1. ГОСТ Р 59370-2021 «Зеленые» стандарты. Посадочный материал декоративных растений. – М.: Стандартинформ, 2021. – 42 с.
2. Prakash, J. Micropropagation of ornamental perennials: progress and problems / J. Prakash // Acta Horticulturae. – 2007. – Vol. 812. III International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants. – P. 289–294. DOI: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2009.812.39
3. Pandey, S. Chapter 15. Clonal propagation / S. Pandey // Recent Advances in Agronomy. – 2022. – P. 155.
4. Муратова, С. А. Биотехнологические аспекты размножения плодовых и ягодных культур / С. А. Муратова // Биология растений и садоводство: теория, инновации. – 2017. – Т. 144, № 2. – С. 84–89. EDN: https://elibrary.ru/ZFDFMJ
5. Гущин, А. В. Оптимизация технологии клонального микроразмножения современных сортов декоративных культур / А. В. Гущин, Е. А. Калашникова, Р. Н. Киракосян // Sciences of Europe. – 2019. – № 38, вып. 2. – С. 28–31. EDN: https://elibrary.ru/ZTHGEP
6. Bertsouklis, K. Seed germination and micropropagation of ornamental plants / K. Bertsouklis, E. Kartsonas, A. Carra // Horticulturae. – 2024. – Vol. 10. – Iss. 6. – P. 541. DOI: https://doi.org/10.3390/horticulturae10060541; EDN: https://elibrary.ru/HCRXGY
7. In vitro microclonal propagation of strawberries and ex vitro adaptation // A. Batukaev, S. Kornatskyi, T. Minkina [et al.] // International Multidisciplinary Scientific GeoConference: SGEM. – 2019. – Vol. 19. – Iss. 6.1. – P. 737–745.
8. Adaptation features of Kamchatka bilberry (Vaccinium praestans Lamb.) plants grown in vitro / N. R. Sungurova, S. S. Makarov, A. I. Chudetsky [et al.] // Lesnoy Zhurnal [Russian Forestry Journal]. – 2025. – № 3. – P. 121–131. DOI: https://doi.org/10.37482/0536-1036-2025-3-121-131; EDN: https://elibrary.ru/WYNPYM
9. Innovative technologies for cloned plants adaptation / E. A. Kalashnikova, D. R. Ganaeva, A. A. Desiaterik [et al.] // Caspian Journal of Environmental Sciences. – 2021. – Vol. 19. – Iss. 5. – P. 877–882. DOI: https://doi.org/10.22124/cjes.2021.5247; EDN: https://elibrary.ru/PWBYFC
10. Влияние спектрального состава светодиодного досвечивания на рост и развитие микрорастений рода Rubus L. на этапе адаптации / М. Л. Дубровский, Р. В. Папихин, С. А. Муратова [и др.] // Достижения науки и техники АПК. – 2024. – Т. 38, № 9. – С. 17–24. DOI: https://doi.org/10.53859/02352451_2024_38_9_17; EDN: https://elibrary.ru/KOIBZT
11. Гусева, М. В. Особенности регенерации разных сортов Heuchera и ×Heucherella в культуре in vitro / М. В. Гусева, И. Л. Крахмалева // Международный журнал прикладных наук и технологий «Integral». – 2021. – № 4. – С. 1–11. DOI: https://doi.org/10.24412/2658-3569-2021-10077; EDN: https://elibrary.ru/MUASRL
12. Development and comparative analysis of initiation ability in large-scale Heuchera propagation using tissue culture versus cuttings / C. Xu, H. Guo, Z. Wang, Y. Chen // Scientific Reports. – 2023. – Vol. 13. – Iss. 1. – P. 14785. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-42001-8; EDN: https://elibrary.ru/WUFIPE
13. In vitro culture of Heuchera villosa ‘Caramel’ / H. Q. Zhao, Q. H. He, L. L. Song [et al.] // Hort. Science. – 2017. – Vol. 52. – Iss. 4. – P. 622–624. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI11340-16
14. Особенности клонального микроразмножения высокодекоративных культиваров вейгелы / Т. С. Стахеева, О. Г. Васильева, Л. Н. Коновалова [и др.] // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. – 2022. – Вып. 8. – С. 61–68. EDN: https://elibrary.ru/OSSMRG
15. Micropropagation of Weigela florida ‘Tango’ through in vitro shoot culture / X. Wang, Y. Li, H. Zeng [et al.] // Hort. Science. – 2017. – Vol. 52. – Iss. 2. – P. 274–277. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI11413-16
16. Wintermans, J. E. G. Spectrophotometric characteristics of chlorophyll a and b and their phaeophytins in ethanol / J. E. G. Wintermans, A. De Mots // Biochimica et Biophysica Acta. – 1965. – Vol. 109. – P. 448–453. DOI: https://doi.org/10.1016/0926-6585(65)90170-6
17. Оценка антиоксидантного статуса растений различных экологических групп Куршской косы / Г. Н. Чупахина, П. В. Масленников, Л. Н. Скрыпник [и др.] // Вестник Российского государственного университета им. И. Канта. Сер. Естественные науки. – 2010. – Вып. 7. – С. 77–83. EDN: https://elibrary.ru/MSYOQP
18. Доспехов, Б. А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) / Б. А. Доспехов. – М.: Агропромиздат, 1985. – 351 с.
19. Light regulation of chlorophyll biosynthesis in plants / F. Wang, J. Yan, X. Chen [et al.] // Acta Hortic. Sin. – 2019. – Vol. 46. – P. 975–994.
